“Akredite bir laboratuvarda biyotest: test kültürlerinin standardizasyonu” - kurs 60.000 ruble. MSU'dan, 6 hafta eğitim. (1,5 ay), Tarih: 28 Kasım 2023.

Biyolojik Bilimler Doktoru, Arazi Kaynakları ve Toprak Değerlendirme Bölümü Profesörü, Moskova Devlet Üniversitesi Toprak Bilimi Fakültesi. Lomonosov.

1 Biyotestin temelleri. Standart yöntemler kullanılarak yapılan biyotestlerde test kültürlerinin kalitesinin önemi.

1.1 Laboratuvar biyotestinin teorik ve pratik yönleri. Farklı taksonomik bağlantılara sahip organizmalara dayanan modern biyotest sistemleri. Ana test fonksiyonlarına ve toksisite kriterlerine giriş.

1.2 Çeşitli standart biyotestler ve test organizmalarının seçimine ilişkin ilkeler. Makbuz kaynakları. Test kültürlerinin kalitesinin ve deney koşullarının sonuç üzerindeki etkisi.

2.1 Test organizmaları olarak mikroalglerin biyolojik özellikleri. Koenobiyal yeşil algler Scenedesmus quadricauda. Polimorfik diatomlar Phaeodactylum tricornutum. Geliştirme yaşam döngüsü. Habitat ve üreme koşulları.

2.2 Test organizması olarak kabukluların biyolojik özellikleri. Daphnia magna, Ceriodaphnia affinis, Artemia salina'nın özellikleri. Geliştirme yaşam döngüsü. Habitat ve üreme koşulları.

2.3 Test organizmaları olarak protozoanın biyolojik ve ekolojik özellikleri. Siliatların yapısı Tetrahymena pyriformis ve Paramecium caudatum. Geliştirme yaşam döngüsü. Habitat ve üreme koşulları.

2.4 Genetiği değiştirilmiş ışıklı bakteriler: üretim kaynakları, bakteriyel preparat "Ecolum"un saklama koşulları, çalışan bir E hücresi süspansiyonunun elde edilmesi ve yaşayabilirliğinin test edilmesi. koli

2.5 Daha yüksek bitkiler. Çift çenekli ve tek çenekli bitkilerin (Sinapis alba, Avena sativa, vb.) tohumlarının kalitesi. Tohum ağırlığındaki farklılıklar. Fitoscan sisteminde fitoetkinin çimlenme enerjisine, kök uzunluğuna ve tohum filizlerinin filizlerine göre değerlendirilmesi.

2.6 Toprak hayvanları. Oligochaeta enchytraeidae (Oligochaeta, Enchytraeidae). Geliştirme yaşam döngüsü. Habitat ve üreme koşulları.

3.1 Kabukluların yetiştirilmesi için ortamlar. Yetiştirme suyu türleri. Kabuklular için biyolojikleştirilmiş tatlı yetiştirme suyu elde etme yöntemleri. Deniz suyunun bileşimi kabuklular için idealdir. Yetiştirme ortamı güncelleme modu. Optimum sıcaklık ve aydınlatma parametreleri. Beslenme rejimi.

3.2 Mikroalg yetiştirme ortamı. Besleyici ortamların hazırlanması: Uspensky-1, Tamiya, Golberg ortamı. Mikroalglerin stok kültürleri. Yetiştirme ortamı güncelleme modu. Optimum sıcaklık ve aydınlatma parametreleri.

3.3 Tek hücrelilerin yetiştirilmesi için ortam. Besin çözeltileri elde etme yöntemleri. Lozin-Lozinsky ortamının bileşimi. Yetiştirme ortamı güncelleme modu. Optimum sıcaklık ve aydınlatma parametreleri.

3.4 Bitkiler ve hayvanlar için katı substratlar. Yapay olarak hazırlanmış referans ve standart topraklar. ISO11268-2 standardı. Optimum sıcaklık, ışık ve nem parametreleri.

4.1 Tatlı su mikroalglerinden Scenedesmus quadricauda'nın duyarlılığının deneysel olarak test edilmesi alg hücrelerinin sayısındaki ve floresans yoğunluğundaki değişikliklere dayalı karşılaştırma toksik madde klorofil

4.2 Deniz mikroalgi Phaeodactylum tricornutum'un klorofil floresansının yoğunluğuna dayalı karşılaştırmalı bir toksik maddeye duyarlılığının deneysel testi

4.3 Tatlı su kabukluları Daphnia magna ve Ceriodaphnia affinis'in hayatta kalma oranına dayalı bir karşılaştırma toksik maddesine duyarlılığının deneysel testi

4.4 Acı su kabukluları Artemia salina'nın hayatta kalma oranına dayalı bir karşılaştırma toksik maddesine duyarlılığının deneysel testi

4.5 Tek hücreli siliatlar Paramecium caudatum'un hayatta kalma açısından karşılaştırmalı bir toksik maddeye duyarlılığının deneysel testi

4.6 Fitoscan sisteminde fitoetkinin çimlenme enerjisine, kök uzunluğuna ve tohum filizlerinin filizlerine göre değerlendirilmesi.